免疫組化染色呈陰性結果的原因有哪些？

1、抗體濃度和質量問題以及抗體來源選擇錯誤。不是抗體濃度越高就越易出現陽性結果，抗原抗體反應有前帶和后帶效應，必須摸索比較好濃度。

2、抗原修復不全，對于甲醛固定的組織必須用充分抗原修復來打開抗原表位，以利于與抗體結合；建議微波修復用高火4次*6min試試。有人做過實驗，這是比較好的時間和次數。若不行，還可高壓修復。

3、組織切片本身這種抗原含量低。

4、血清封閉時間過長。

5、DAB孵育時間過短。

6、細胞通透不全，抗體未能充分進入胞內參與反應。

7、開始做免疫組化，建議一定要首先做個陽性對照片，排除抗體等問題。 如何做好免疫組化實驗？做得好的免疫組化多少錢

免疫組化實驗所用的抗體

免疫組化實驗中常用的抗體為單克隆抗體和多克隆抗體。單克隆抗體是一個B淋巴細胞克隆分泌的抗體，應用細胞融合雜交瘤技術免疫動物制備。多克隆抗體是將純化后的抗原直接免疫動物后，從動物血中所獲得的免疫血清，是多個B淋巴細胞克隆所產生的抗體混合物。

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免疫組化常用的染色方法

根據標記物的不同分為免疫熒光法，免疫酶標法，親和組織化學法，后者是以一種物質對某種組織成分具有高度親合力為基礎的檢測方法。這種方法敏感性更高，有利于微量抗原(抗體)在細胞或亞細胞水平的定位，其中生物素—抗生物素染色法常用。 動物組織免疫組化價格英瀚斯生物免疫組化，高效高質量出結果。

免疫組化技術有哪些應用？

定位和定性是免疫組化比較大的優勢。相比于其他蛋白檢測方法，免疫組化具有定位較直接準確、定性靈敏度高，是定位檢測分析優先方法，尤其對于有些因子的轉位研究十分有用。免疫組織化學的臨床應用主要包括以下幾方面：惡性**的診斷與鑒別定性；確定轉移性惡性**的原發部位；對某類**進行進一步的病理分型；軟組織**診斷；為臨床提供治療方案的選擇；近年來，隨著免疫組織化學技術的發展和各種特異性抗體的出現，使許多疑難**得到了明確診斷。免疫組化在**診斷和鑒別診斷中的實用價值受到了普遍的認可，其在低分化或未分化**的鑒別診斷時，準確率可達50%-75%。

免疫組化的發展路程？在臨床病理診斷中，免疫組織化學(IHC)是一種很重要的技術和手段，從20世紀70年代開始，免疫組化技術就應用于病理診斷，對于診斷cancer、cancer分類、判斷預后產生了巨大的影響，同時也擴展了人們對于各種疾病及cancer形成過程的認識，提高了病理診斷與研究水平。但是，隨著免疫組化的廣泛應用，發現免疫組化技術存在一些局限性。深入研究免疫組化原理和技術，必須熟悉各種抗體真陽性反應部位，實現實驗室間免疫組化標準化，使免疫組化在病理診斷中發揮比較大的輔助作用。如果您有免疫組化相關的實驗，可以與我們英瀚斯生物進行聯系。常見的免疫組化方法有哪些？

免疫組化在什么情況下進行組織抗原修復，抗原修復的條件是什么？ 

（1）由于組織中部分抗原在甲醛或多聚甲醛固定過程中，發生了蛋白之間交聯及醛基的封閉作用，從而失去抗原性。通過抗原修復，使得細胞內抗原決定族重新暴露，提高抗原檢測率。

（2）修復方法從強到弱一般分為三種，高壓修復、微波修復、胰酶修復。修復液也分為若干種（具體的可以查閱相關資料，大量的：中性的、高pH的等）。

（3）微波修復，我們一般用6min*4次，效果不錯。

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免疫組化應該選擇石蠟切片還是冰凍切片？ 

（1）要求做冰凍切片的不一定能做石蠟切片，這是***我向一老師請教得出的結論。因為作石蠟切片時要高溫烤片，可能會破壞組織的抗原性，如果組織的抗原性較穩定，則可作石蠟切片；但是要求做石蠟切片的，可作冰凍切片。

（2）冰凍切片的優點是能夠較好的保存組織的抗原免疫活性，做免疫組化時不需抗原修復這一步。缺點是細胞內易形成冰晶而破壞細胞結構，可能會使抗原彌散；切片厚度較石蠟的厚，做的片子沒石蠟的漂亮。當你買一抗時，目錄上都寫著做什么樣的切片，如果它寫著只能做冰凍，就不能做石蠟，如寫著兩者都可，那就都能做。

（3）石蠟切片的優點可以保持組織細胞的形態結構，且容易存放在室溫，而冰凍切片比較麻煩，一定要存在-80度的低溫冰箱中，尤其是用來做原位雜交的的切片，為了防止RNA降解，保存一貫很重要。由于石蠟切片可以切到4微米左右，所以原位雜交探針容易滲透到組織中去，容易成功，而且得到的顏色/形態都較冰凍切片好。

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