免疫組化染色切片的好壞直接影響著病理醫生對其染色結果的判斷,進而影響病理診斷,所以制作一張良好的免疫組化切片至關重要,它需要病理醫生與病理技師兩者間的相互協調,密切配合和共同努力,病理醫生選擇抗體,設置對照,判讀結果,指導技術;而技術人員進行實驗操作,保證染色質量。在免疫組化切片的制作過程存在多個環節,每一環節的失誤都可能影響檢測結果,如抗原保存,蛋白酶消化,增強技術及對抗體的管理、使用和試劑的濃度等等,因此制作一張高質量的免疫組織化學切片是多方面相互配合的結果。免疫組化檢測多少錢?云南做得好的免疫組化怎么樣
關于免疫組化的封閉:用和二抗來源一致的血清在保濕盒中于37℃孵育15~30min,然后甩去封閉用血清,勿洗;注意:封閉時間根據具體實驗調整;封閉液一般選用5%BSA或與二抗來源一致的血清,切記是BSA,不是PBS.很多論壇寫的是PBS,太坑了。①使用血清好還是BSA好?答:***是待檢樣本會非特異性的和蛋白結合,從而導致背景過高,因此可以用BSA或血清封閉掉這部分非特異性的結合,從這點看,BSA和血清沒有明顯區別。第二是待檢樣本中可能會有Fc受體,可以和抗體恒定區結合,與抗體特異性無關,封閉血清中有抗體,因此用血清可以封閉掉一抗及二抗和樣本Fc受體之間結合。BSA則無法封閉Fc受體。湖北小鼠免疫組化可以做什么免疫組化的樣本保存要求是什么?
免疫組化的發展路程?在臨床病理診斷中,免疫組織化學(IHC)是一種很重要的技術和手段,從20世紀70年代開始,免疫組化技術就應用于病理診斷,對于診斷cancer、cancer分類、判斷預后產生了巨大的影響,同時也擴展了人們對于各種疾病及cancer形成過程的認識,提高了病理診斷與研究水平。但是,隨著免疫組化的廣泛應用,發現免疫組化技術存在一些局限性。深入研究免疫組化原理和技術,必須熟悉各種抗體真陽性反應部位,實現實驗室間免疫組化標準化,使免疫組化在病理診斷中發揮比較大的輔助作用。如果您有免疫組化相關的實驗,可以與我們英瀚斯生物進行聯系。
免疫組化的基本原理
免疫組化(Immunohistochemistry, IHC)是一種利用抗原-抗體特異性結合的原理,通過顯色反應在組織切片上定位特定蛋白質的技術。該技術結合了免疫學和組織學的優點,能夠在細胞或亞細胞水平上精確顯示目標蛋白的分布和表達情況。免疫組化的基本原理是利用一抗與目標蛋白結合,再通過二抗與一抗結合,通過顯色系統(如DAB)使目標蛋白可視化。這種方法不僅能夠提供蛋白質的定位信息,還能通過半定量分析評估蛋白質的表達水平。 關于免疫組化,你想知道的都在這里!
免疫組化實驗所用的抗體
免疫組化實驗中常用的抗體為單克隆抗體和多克隆抗體。單克隆抗體是一個B淋巴細胞克隆分泌的抗體,應用細胞融合雜交瘤技術免疫動物制備。多克隆抗體是將純化后的抗原直接免疫動物后,從動物血中所獲得的免疫血清,是多個B淋巴細胞克隆所產生的抗體混合物。
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免疫組化常用的染色方法
根據標記物的不同分為免疫熒光法,免疫酶標法,親和組織化學法,后者是以一種物質對某種組織成分具有高度親合力為基礎的檢測方法。這種方法敏感性更高,有利于微量抗原(抗體)在細胞或亞細胞水平的定位,其中生物素—抗生物素染色法常用。 免疫組化失敗的原因?云南細胞免疫組化實驗
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免疫組化的局限性,可能會有假陽性。陽性信號定位不正確即為假陽性,包括著色不勻、背景著色、邊緣效應,另外組織的某些特定成分也能導致假陽性結果。假陽性可能的原因有:(1)一抗濃度及一抗是否失效,抗體有一個合適的濃度范圍且必須在有效期內使用,過期的抗體或者不著色,或者背景著色,形成假陽性;(2)試劑未充分覆蓋組織,組織邊緣的試劑易干濃度較組織中間高致深染;(3)抗體孵育時間過長,由于室溫的影響夏季孵育時間稍短,冬季孵育時間稍長;(4)操作過程中組織變干,造成組織邊緣收縮或損壞形成偽影,產生假陽性;(5)3,3'-二氨基聯苯胺(DAB)顯色時間太長,DAB宜現配現用,配制時間比較好在30min以內;(6)由于胞漿里含有較多的蛋白質,因此間質和胞漿中出現很多非特異性的染色,如內源性酶血紅蛋白、肌紅蛋白等造成的著色,可以通過血清封閉解決;乳腺cancer組織中的脂肪細胞、淋巴細胞也會產生非特異性的染色;(7)非特異性抗體吸附常見于壞死組織中,使壞死組織呈較高的背景染色,在免疫組化中應避免選擇壞死組織較多的蠟塊。云南做得好的免疫組化怎么樣