免疫組化實(shí)驗(yàn)流程介紹：

英瀚斯生物為您整理總結(jié)免疫組化詳細(xì)步驟：

1、SP三步法

1）石蠟切片，常規(guī)脫蠟至水。

2）0.3%或3%H2O2去離子水（無(wú)色液體）孵育10-30分鐘，以滅活內(nèi)源性過(guò)氧化物酶活性。

3）蒸餾水沖洗，PBS浸泡5分鐘

4）候選步驟：采用抗原修復(fù)：微波（建議30分鐘內(nèi)4次中火）、高壓、酶修復(fù)方法。自然冷卻，再用3分鐘×3次.

5）血清封閉：室溫15-30分鐘，盡可能與二抗來(lái)源一致。傾去，勿洗。

6）滴加適當(dāng)比例稀釋的一抗，37℃孵育2~3小時(shí)或4℃過(guò)夜（比較好復(fù)溫）。PBS沖洗，3分鐘×5次。

7）滴加生物素標(biāo)記的二抗，室溫或37℃孵育30分鐘-1h。

8）PBS沖洗，3分鐘×5次。

9）滴加SP（鏈霉親和素-過(guò)氧化物酶），室溫或37℃孵育30分鐘-1h。

10）PBS沖洗，3分鐘×5次。

11）顯色劑顯色（DAB等）。

12）自來(lái)水充分沖洗。

13）可進(jìn)行復(fù)染，脫水，透明。

14）選擇適當(dāng)?shù)姆馄瑒┓馄?英瀚斯生物免疫組化，高效高質(zhì)量出結(jié)果。貴州動(dòng)物組織免疫組化推薦

病理醫(yī)師日常工作中經(jīng)常說(shuō)的一句話應(yīng)該就是“做個(gè)免疫組化吧”；不管是臨床醫(yī)師，還是患者，他們問(wèn)的多的問(wèn)題則是“為什么要做免疫組化？”病理醫(yī)師通過(guò)“特殊染色”來(lái)進(jìn)行細(xì)胞的識(shí)別。這一做法的依據(jù)是特定細(xì)胞和組織中的成分不同、則化學(xué)性質(zhì)不同，通過(guò)染色的方法則可以呈現(xiàn)不同顏色。不過(guò)，由于組織固定或儲(chǔ)存等，會(huì)造成相應(yīng)物質(zhì)的活性降低甚至消失，因而限制了特殊染色方法的應(yīng)用。隨著免疫學(xué)研究的進(jìn)展，根據(jù)抗原與相應(yīng)抗體間特異性結(jié)合的性質(zhì)，則有了現(xiàn)在免疫組化的方法：不同細(xì)胞、不同組織中抗原有一定差異，抗體與被測(cè)組織中的特定抗原結(jié)合，進(jìn)而通過(guò)一定顯色方法將結(jié)合的抗體顯示出來(lái)。如有相應(yīng)顯色，則證實(shí)可能有被測(cè)抗原；無(wú)顯色則可能無(wú)被測(cè)抗原。當(dāng)然，這一方法中需注意相應(yīng)的“例外”，如抗體的非特異性結(jié)合、非特異性顯色，則容易造成“假陽(yáng)性”；或者雖有相關(guān)抗原、但所用抗體與該抗原并未結(jié)合等，則容易造成“假陰性”。隨著免疫組化的應(yīng)用經(jīng)驗(yàn)的增加，這些問(wèn)題在常規(guī)應(yīng)用中盡量得以避免，前者如各種顯色方法的優(yōu)化；后者如抗原修復(fù)方法的優(yōu)化、新型抗體開(kāi)發(fā)及選擇。細(xì)胞免疫組化外包常見(jiàn)的免疫組化方法有哪些？

確定cancer分期，免疫組化技術(shù)應(yīng)用于臨床可以進(jìn)行處理哦，英瀚斯生物為您處理。cancer分期是判斷預(yù)后的一個(gè)指標(biāo)，與是否浸潤(rùn)、有無(wú)淋巴管或血管侵襲密切相關(guān)，而通過(guò)免疫組化方法可以判斷cancer是否浸潤(rùn)、有無(wú)淋巴管或血管侵襲。層黏連蛋白和Ⅳ型膠原的單克隆抗體可以清楚的顯示基膜的主要成分，用于區(qū)分原位*和浸潤(rùn)*，一旦上皮性*突破基膜為浸潤(rùn)，未突破基膜為原位;顯示血管和淋巴管內(nèi)皮細(xì)胞的標(biāo)記物第八因子相關(guān)蛋白、D2-40等則可清楚顯示cancer對(duì)血管或淋巴管的浸潤(rùn)。因此對(duì)許多cancer的良惡性鑒別及有無(wú)血管或淋巴管浸潤(rùn)，免疫組化結(jié)果作為主要的鑒別依據(jù)。

實(shí)驗(yàn)失敗常見(jiàn)問(wèn)題分析有哪些：

為什么在顯微鏡下觀察發(fā)現(xiàn)所有的切片都成陰性？

答：這種現(xiàn)象主要是由操作不當(dāng)導(dǎo)致，可能的原因有：1.染色操作不當(dāng)，致使染色失敗；2.漏加一種抗體或者制備出的抗體沒(méi)有活性；3.緩沖液中有疊氮化鈉，抑制了酶的活性；4.復(fù)染或脫水劑使用不當(dāng)?shù)取＝ㄗh逐一排查，找到原因后重新進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。

在顯微鏡下觀察發(fā)現(xiàn)所有的切片都成陽(yáng)性，這是為什么？答：與上一個(gè)問(wèn)題類似，出現(xiàn)的原因也是試驗(yàn)操作存在問(wèn)題，可能的原因有：1.切片在染色過(guò)程中抗體過(guò)濃，或者干片了；使用的呈色底物溶液已變色或呈色反應(yīng)時(shí)間過(guò)長(zhǎng)；3.抗體溫育的時(shí)間過(guò)長(zhǎng)等。

在顯微鏡下觀察發(fā)現(xiàn)切片的背景很深，這是為什么？答：以下幾方面會(huì)導(dǎo)致切片的背景過(guò)深：1.蛋白質(zhì)封閉不夠或所用血清溶血，造成抗體的非特異性反應(yīng)；2.內(nèi)源性過(guò)氧化酶沒(méi)有完全阻斷，顯色過(guò)程中過(guò)氧化酶與酶底物反應(yīng)，造成背景；3.底物呈色反應(yīng)時(shí)間過(guò)長(zhǎng)或呈色反應(yīng)后漂洗不徹底。 大鼠、小鼠組織免疫組化，找英瀚斯生物。

免疫組化的局限性，可能會(huì)有假陽(yáng)性。陽(yáng)性信號(hào)定位不正確即為假陽(yáng)性，包括著色不勻、背景著色、邊緣效應(yīng)，另外組織的某些特定成分也能導(dǎo)致假陽(yáng)性結(jié)果。假陽(yáng)性可能的原因有:(1)一抗?jié)舛燃耙豢故欠袷В贵w有一個(gè)合適的濃度范圍且必須在有效期內(nèi)使用，過(guò)期的抗體或者不著色，或者背景著色，形成假陽(yáng)性;(2)試劑未充分覆蓋組織，組織邊緣的試劑易干濃度較組織中間高致深染;(3)抗體孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng)，由于室溫的影響夏季孵育時(shí)間稍短，冬季孵育時(shí)間稍長(zhǎng);(4)操作過(guò)程中組織變干，造成組織邊緣收縮或損壞形成偽影，產(chǎn)生假陽(yáng)性;(5)3，3'-二氨基聯(lián)苯胺(DAB)顯色時(shí)間太長(zhǎng)，DAB宜現(xiàn)配現(xiàn)用，配制時(shí)間比較好在30min以內(nèi);(6)由于胞漿里含有較多的蛋白質(zhì)，因此間質(zhì)和胞漿中出現(xiàn)很多非特異性的染色，如內(nèi)源性酶血紅蛋白、肌紅蛋白等造成的著色，可以通過(guò)血清封閉解決;乳腺cancer組織中的脂肪細(xì)胞、淋巴細(xì)胞也會(huì)產(chǎn)生非特異性的染色;(7)非特異性抗體吸附常見(jiàn)于壞死組織中，使壞死組織呈較高的背景染色，在免疫組化中應(yīng)避免選擇壞死組織較多的蠟塊。如何做好免疫組化實(shí)驗(yàn)？貴州小鼠免疫組化推薦

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免疫組化實(shí)驗(yàn)所用的組織和細(xì)胞標(biāo)本是什么樣的？

實(shí)驗(yàn)所用主要為組織標(biāo)本和細(xì)胞標(biāo)本兩大類，前者包括石蠟切片（病理大片和組織芯片）和冰凍切片，后者包括組織印片、細(xì)胞爬片和細(xì)胞涂片。其中石蠟切片是制作組織標(biāo)本**常用、**基本的方法，對(duì)于組織形態(tài)保存好，且能作連續(xù)切片，有利于各種染色對(duì)照觀察；還能長(zhǎng)期存檔，供回顧性研究；石蠟切片制作過(guò)程對(duì)組織內(nèi)抗原暴露有一定的影響，但可進(jìn)行抗原修復(fù)，是免疫組化中優(yōu)先的組織標(biāo)本制作方法。

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