BstDNAPolymerase,LargeFragment（嗜熱脂肪芽孢桿菌DNA聚合酶大片段）是一種經過改造的酶，它來源于嗜熱脂肪芽孢桿菌（Bacillusstearothermophilus）DNA聚合酶I，通過重組技術在大腸桿菌中表達并純化獲得。這種酶具有5'→3'的DNA聚合酶活性，但不具有5'→3'的核酸外切酶活性，因此它在等溫擴增反應中非常有用，如環介導的等溫擴增（LAMP）和滾環擴增（RCA）等。以下是BstDNAPolymerase,LargeFragment的一些關鍵特點和應用：1.**等溫擴增**：BstDNAPolymerase,LargeFragment具有很強的鏈置換能力，適用于多種等溫擴增反應，這些反應通常在50-68°C之間進行，比較好反應溫度為65°C。2.**快速測序**：由于其高聚合酶活性，BstDNAPolymerase,LargeFragment可以用于快速測序，特別是對于高GC含量的DNA模板或微量（納克量級）DNA模板的測序。3.**全基因組擴增**：BstDNAPolymerase,LargeFragment也可用于全基因組擴增（WGA），這是一種在不需要熱循環儀的情況下擴增整個基因組DNA的技術。4.**高dUTP耐受性**：與BstDNAPolymerase2.0相比，BstDNAPolymerase,LargeFragment在進行等溫擴增時不具有將dUTP摻入合成的DNA鏈的能力，這使得它在某些應用中更具優勢。泛素蛋白是一種在真核細胞中存在的小分子蛋白質，由76個氨基酸殘基組成，具有高度的保守性。Recombinant Human CD28H/IGPR-1 (His Tag)

5'-3'外切核酸酶活性是指DNA聚合酶能夠從DNA鏈的5'端向3'端切除核苷酸的能力。這種活性通常用于修復受損的DNA或去除錯誤配對的核苷酸。具體來說，5'-3'外切核酸酶活性可以在DNA合成過程中切除前方的核苷酸，幫助錯誤或不需要的序列，從而確保DNA的正確復制和修復。在DNA聚合酶中，5'-3'外切核酸酶活性與聚合酶活性相輔相成。聚合酶在合成新鏈時，5'-3'外切酶活性可以在發現錯誤時進行修正，確保合成的DNA鏈的準確性。例如，E.coliDNA聚合酶I具有這種外切酶活性，可以在合成過程中去除錯誤的核苷酸，從而提高DNA的保真度。需要注意的是，BstDNAPolymerase,LargeFragment不具有5'-3'外切核酸酶活性，這使得它在某些應用中更為穩定，特別是在等溫擴增反應中，如LAMP（環介導等溫擴增）和RCA（滾環擴增）等。Recombinant Mouse SLAMF7/CRACC/CD319 Protein,His Tag去泛素化酶（Deubiquitinating enzymes, DUBs）可以去除泛素化蛋白上的泛素鏈，使泛素分子得以回收和再利用。

SpCas9蛋白（來自化膿性鏈球菌的Cas9蛋白）在基因編輯中的主要作用是作為核酸酶，能夠精確地切割目標DNA序列。以下是SpCas9在基因編輯中的幾個關鍵步驟和作用：1.**識別和結合**：SpCas9蛋白與一個單導向RNA（sgRNA）結合，形成RNP復合物。這個復合物能夠識別并結合到基因組中與sgRNA互補的特定DNA序列。2.**PAM序列識別**：SpCas9需要一個稱為原間隔子相鄰基序（PAM）的特定序列作為識別目標DNA的先決條件。對于SpCas9，這個PAM序列通常是5'-NGG-3'。3.**DNA切割**：一旦RNP復合物與目標DNA結合，SpCas9就會在PAM序列的3個堿基對的上游位置切割DNA雙鏈，產生一個雙鏈斷裂（DSB）。4.**引發DNA修復**：DNA雙鏈斷裂觸發細胞的DNA修復機制，包括同源定向修復（HDR）和非同源末端連接（NHEJ）。研究人員可以利用這些修復機制來插入、刪除或替換特定的DNA序列。5.**基因修改**：通過HDR，可以在斷裂的DNA兩端引入特定的DNA模板，從而實現精確的基因編輯。而NHEJ通常會導致小的插入或缺失（indel），這可以用來產生基因的敲除或敲入。6.**提高編輯效率**：為了提高SpCas9的編輯效率，研究人員可能會使用優化的sgRNA設計、蛋白質工程或嵌合融合蛋白等策略。

NLS-Cas9Nuclease是一種重組的化膿性鏈球菌Cas9蛋白，它在N端和C端都添加了核定位信號（NLS），這使得它能夠更有效地進入細胞核并進行基因組編輯。這種蛋白與CRISPR/Cas9系統的引導RNA（gRNA）形成穩定的核糖核的蛋白（RNP）復合物，可以在進入細胞后立即定位到細胞核，從而誘導特定的DNA雙鏈斷裂，實現基因編輯。與傳統的mRNA或質粒系統相比，使用NLS-Cas9Nuclease不需要轉錄和翻譯過程，因此可以避免將外源DNA插入基因組的風險，這對于基因編輯尤其有用。NLS-Cas9Nuclease的特點包括：1.無DNA：系統不添加外部DNA，降低了插入外源DNA的風險。2.高切割效率：雙NLS確保Cas9蛋白高效進入細胞核。3.低脫靶效應：Cas9核酸酶的瞬時表達提高了切割的特異性。4.節省時間：無需轉錄和翻譯過程。這種核酸酶可以用于體外DNA切割篩選高效和特異性靶向gRNA，以及通過電穿孔或注射與特定gRNA結合時的體內基因編輯。產品的保存條件通常是在-25~-15℃，有效期為一年。使用時，可以根據推薦的反應體系進行體外DNA裂解實驗，并通過瓊脂糖凝膠電泳檢測消化效率。具體產品的詳細信息和應用指南，可以參考金斯瑞生物科技有限公司、NEB、金斯瑞、YEASEN和Novoprotein等公司提供的資料。FnCas12a系統的脫靶效應較低，這對于減少非目標效應和提高物質的安全性至關重要。

使用BloodGenomicDNAIsolationKitwithMagneticBeads（血液基因組DNA提取試劑盒，磁珠法）進行血液樣本中基因組DNA的提取，主要步驟如下：1.**實驗準備**：準備抗凝全血樣本（如EDTA抗凝血），移液器及無菌，15ml離心管，無水乙醇，70%乙醇，干凈的吸水紙，渦旋振蕩器，金屬浴/水浴，臺式離心機等。2.**樣本處理**：取適量血液樣本，根據試劑盒要求，可能需要將血液體積調整至特定量，例如200μl，并可能需要加入PBS緩沖液。3.**裂解血液細胞**：向血液樣本中加入蛋白酶K和細胞裂解液，渦旋混勻后，置于金屬浴或水浴中進行裂解，通常在65°C孵育10-15分鐘，并在此期間定期混勻。4.**DNA與磁珠結合**：向裂解后的樣本中加入異丙醇和磁珠懸浮液，渦旋混勻后，室溫放置一段時間，以便于基因組DNA與磁珠結合。5.**磁珠分離**：將樣本置于磁力架上，待磁珠聚集后，小心移除上清液，去除雜質。6.**洗滌磁珠**：向磁珠中加入漂洗液和洗滌液，進行洗滌以去除殘留的蛋白質和鹽分，然后再次使用磁力架分離磁珠，移除洗滌液。

在泛素化過程中，首先泛素激起酶E1（Uba1或其他）在ATP的存在下激起泛素分子，形成E1-泛素硫酯中間體。Recombinant Human CD28H/IGPR-1 (His Tag)

在基因編輯中，除了NLS-Cas9-EGFPNuclease，還有多種技術可以提高編輯的特異性，這些技術包括：1.**高保真Cas9變體**：通過工程化改造Cas9蛋白，例如使用SpCas9-HF1或eSpCas9等高保真變體，可以減少脫靶效應，提高特異性。2.**堿基編輯器（BaseEditors）**：這類編輯器可以在不產生DNA雙鏈斷裂的情況下直接在特定位置進行單個堿基的轉換，從而減少非目標編輯。3.**引導編輯器（PrimeEditors）**：由哈佛大學劉如謙教授團隊開發的引導編輯器可以在不依賴DNA雙鏈斷裂和同源定向修復的情況下，實現精細的基因組編輯。4.**CRISPRi和CRISPRa**：這兩種技術分別用于抑制或激起特定基因的表達，而不切割DNA，從而減少了脫靶風險。5.**新型CRISPR系統**：例如CRISPR/Cas12j和CRISPR/CasΦ，這些系統可能具有不同的PAM序列要求和更高的特異性。6.**AI輔助設計**：利用人工智能預測和優化sgRNA的設計，以減少脫靶效應。7.**優化遞送系統**：改進CRISPR組分的遞送方法，例如使用核糖核的蛋白（RNP）復合物，可以提高編輯效率和特異性。8.轉座子編輯系統：利用轉座子進行基因組編輯，可以在不依賴DNA雙鏈斷裂的情況下實現大片段DNA序列的插入。