T4UvsX重組酶的保存和純化是實驗室工作流程中的重要環節，確保了酶的穩定性和活性。以下是根據搜索結果提供的信息：保存條件：-T4UvsX重組酶通常在-20°C的條件下保存，可以保持3年的有效期。-某些產品說明中提到，該制品不含甘油，可用于建立凍干體系，這可能對長期保存和運輸有額外的好處。-建議避免反復凍融，因為這可能會影響酶的活性。純化過程：-T4UvsX重組酶是由大腸桿菌表達和純化的。這意味著科學家首先將T4噬菌體的uvsX基因克隆到適合在大腸桿菌中表達的質粒載體中。-然后將這個質粒轉化到大腸桿菌宿主細胞中，使其表達T4UvsX蛋白。-接下來，通過一系列生化步驟從大腸桿菌細胞中提取和純化T4UvsX蛋白，這些步驟可能包括細胞裂解、離心、層析等技術。注意事項：-T4UvsX重組酶的保存液中甘油含量為20%，建議單獨分裝保存，以避免反復凍融。-該酶無核酸酶活性，這表明它在催化反應時不會切割DNA鏈，而是促進DNA鏈的重組。-本產品用于科研用途，不應用于臨床診斷。應用：-T4UvsX重組酶主要用于等溫擴增技術，如重組酶聚合酶擴增（RPA），這是一種快速、靈敏的核酸檢測技術。通過遵循這些保存和純化指南，研究人員可以確保T4UvsX重組酶在實驗中的有效性和可靠性。通過SDS-PAGE、Western blot、質譜等方法驗證蛋白的純度和分子量。通過活性測試評估蛋白的生物活性。p5 Ligand for Dnak and and DnaJ

T4UvsX重組酶在生產時由大腸桿菌表達和純化，指的是利用分子生物學技術將T4UvsX重組酶的基因克隆到大腸桿菌（Escherichiacoli）中，然后通過大腸桿菌的生物合成機制來生產這種酶。具體過程如下：1.**基因克隆**：首先，科學家們會從T4噬菌體中分離出編碼T4UvsX重組酶的基因。2.**載體構建**：將這個基因插入到一個質粒（一種小型、圓形的DNA分子）中，這個質粒可以作為載體，將目標基因導入大腸桿菌。3.**轉化**：將含有T4UvsX基因的質粒轉化到大腸桿菌細胞中。轉化是指將外源DNA引入到細胞內的過程。4.**表達**：一旦質粒進入大腸桿菌細胞，它將開始表達T4UvsX基因，即利用大腸桿菌的核糖體和其他細胞機制來合成T4UvsX重組酶的蛋白質。5.**培養**：將轉化后的大腸桿菌在適宜的培養基中培養，使其繁殖，從而增加T4UvsX重組酶的產量。6.**純化**：培養一段時間后，收集大腸桿菌細胞，通過一系列生化方法（如離心、過濾、層析等）從細胞裂解物中提取并純化T4UvsX重組酶。Recombinant Cynomolgus IL-4 R alpha/CD124 Protein,His Tag在基因編輯中，Pfu DNA Polymerase 可用于目的基因或編輯工具的克隆，減少克隆過程中的非目標突變。

磁珠法質粒小量抽提試劑盒通過一系列優化的步驟來確保從細菌細胞中提取高質量和高純度的質粒DNA。以下是這一過程的一般步驟：1.**細胞培養**：-首先，將含有質粒的大腸桿菌在適宜的培養基中培養至適宜密度（通常是OD600約0.6-1.2）。2.**裂解細胞**：-使用試劑盒提供的裂解液（含有SDS和可能的其他裂解成分）破壞細菌細胞壁和膜，釋放出細胞內容物。3.**吸附磁珠**：-將磁珠加入裂解后的混合物中，磁珠表面修飾有能夠特異性結合核酸的配體，使得質粒DNA吸附于磁珠表面。4.**磁分離**：-利用磁力架將吸附有質粒DNA的磁珠從溶液中分離出來，去除未結合的蛋白質和其他細胞碎片。5.**洗滌雜質**：-經過幾次洗滌步驟，使用試劑盒提供的洗滌液去除吸附在磁珠表面的蛋白質、RNA和其他雜質。6.**去除洗滌液**：-磁分離后，小心地移除洗滌液，避免磁珠干燥或吸入磁珠，以確保純度。7.**洗脫質粒**：-使用試劑盒提供的洗脫液（通常是低鹽或高pH的緩沖液）將質粒DNA從磁珠上洗脫下來。8.**收集質粒**：-洗脫后的質粒DNA通常在室溫或4°C下保存，避免多次凍融，以維持DNA的完整性。

磁珠本身并不直接參與電泳過程，但它們可以用于電泳后的樣品處理，特別是在核酸（DNA或RNA）的提取和純化過程中。以下是使用磁珠進行電泳后樣品處理的一般步驟：1.**凝膠電泳**：-首先，將DNA或RNA樣品通過凝膠電泳進行分離。凝膠通常是瓊脂糖或聚丙烯酰胺凝膠，根據樣品的大小和類型選擇合適的凝膠濃度和緩沖體系。2.**觀察和切割**：-電泳完成后，使用紫外線照射凝膠并使用適當的染料（如EB或SYBRGreen）對DNA或RNA進行染色，以在紫外光下觀察到DNA或RNA的條帶。3.**樣品提取**：-確定目標DNA或RNA條帶后，使用干凈的工具（如切割器或移液槍）從凝膠中切割出含有目標分子的凝膠片段。4.**磁珠準備**：-根據磁珠試劑盒的說明書，準備磁珠。通常包括磁珠的重懸和可能的表面修飾，以確保它們能夠特異性地結合目標核酸。5.**樣品與磁珠混合**：-將切割出的凝膠片段轉移到含有磁珠的溶液中，溫和地混合以促進磁珠與核酸的結合。6.**磁分離**：-將含有磁珠和核酸的混合物置于磁分離架上，利用磁場使磁珠快速聚集在管底，從而實現與溶液的分離。7.**洗滌**：-移除未結合的溶液，向磁珠上加入洗滌液，再次進行磁分離以去除雜質。在一項研究中，比較了具有不同NLS融合的Cas9蛋白和Cas9 mRNA在斑馬魚基因組編輯中的效率。

DNA瓊脂糖凝膠電泳是一種常用的分子生物學技術，用于分離、鑒定和定量DNA片段。以下是關于DNA瓊脂糖凝膠電泳的一些關鍵點：1.**原理**：-利用瓊脂糖凝膠作為介質，DNA片段在電場作用下根據其大小和電荷差異進行分離。較小的DNA片段遷移速度快，而較大的片段遷移速度慢。2.**瓊脂糖**：-一種由瓊脂糖粉末和緩沖液（如TAE或TBE）混合制成的凝膠。瓊脂糖濃度通常在0.7%到2%之間，濃度越高，分辨率越高，但凝膠孔隙越小，遷移速度越慢。3.**樣品準備**：-DNA樣品通常需要在加載前進行適當的處理，如純化、稀釋，有時還需添加樣品緩沖液以保證樣品在電泳過程中的穩定性。4.**加載樣品**：-使用微量移液管將樣品和加載緩沖液（通常含有追蹤染料，如溴酚藍）混合后，小心地加載到凝膠孔中。5.**電泳**：-將凝膠置于電泳槽中，連接電源，施加恒定電壓進行電泳。電壓和時間根據凝膠濃度和所需分辨率進行調整。6.**染色**：-電泳完成后，為了可視化DNA條帶，通常使用熒光染料如EB（溴化乙錠）或SYBRGreen進行染色。染色后的凝膠在紫外光下觀察，DNA條帶會發出熒光。7.**分析**：-通過比較DNA條帶的位置和已知大小的DNA標準品（DNAladder），可以估計DNA片段的大小。

Recombinant Biotinylated Human MAGE-A3 (HLA-A*24:02) Protein, His-Avi Tag 是一種通過重組DNA技術。p5 Ligand for Dnak and and DnaJ

pA-Tn5轉座酶是一種經過特殊改造的融合蛋白，由ProteinA和高活性的Tn5轉座酶組成，具有以下主要應用：1.**高通量測序建庫**：pA-Tn5轉座酶可以用于快速構建用于高通量測序的DNA文庫，通過其轉座酶活性實現DNA片段化，同時加上測序接頭，簡化了傳統DNA測序建庫的多步過程。2.**CUT&Tag技術**：這是一種新興的蛋白質與DNA相互作用研究方法，pA-Tn5轉座酶利用ProteinA與特定抗體結合，將轉座酶帶到目標蛋白附近進行DNA切割和標簽添加，實現對蛋白質結合位點的高通量測序分析。CUT&Tag技術具有高特異性、低背景噪音、高靈敏度、良好重復性等優點，適用于表觀遺傳學、干細胞等領域的研究。3.**ATAC-seq**：pA-Tn5轉座酶也可用于ATAC-seq實驗，這是一種研究染色質可及性的方法，通過轉座酶在沒有核酸酶消化的情況下切割染色質DNA，然后在切割位點加上測序接頭，進行后續的測序分析。4.**轉錄組測序快速建庫**：有研究開發了基于Tn5轉座酶的轉錄組測序快速建庫方法，例如SHERRY方法，它利用Tn5轉座酶直接作用于RNA/DNA雜交鏈，簡化了建庫過程，適用于單細胞轉錄組測序，提高了樣本的利用率和測序速度。