T4UvsX重組酶的保存和純化是實(shí)驗(yàn)室工作流程中的重要環(huán)節(jié)，確保了酶的穩(wěn)定性和活性。以下是根據(jù)搜索結(jié)果提供的信息：保存條件：-T4UvsX重組酶通常在-20°C的條件下保存，可以保持3年的有效期。-某些產(chǎn)品說明中提到，該制品不含甘油，可用于建立凍干體系，這可能對(duì)長(zhǎng)期保存和運(yùn)輸有額外的好處。-建議避免反復(fù)凍融，因?yàn)檫@可能會(huì)影響酶的活性。純化過程：-T4UvsX重組酶是由大腸桿菌表達(dá)和純化的。這意味著科學(xué)家首先將T4噬菌體的uvsX基因克隆到適合在大腸桿菌中表達(dá)的質(zhì)粒載體中。-然后將這個(gè)質(zhì)粒轉(zhuǎn)化到大腸桿菌宿主細(xì)胞中，使其表達(dá)T4UvsX蛋白。-接下來，通過一系列生化步驟從大腸桿菌細(xì)胞中提取和純化T4UvsX蛋白，這些步驟可能包括細(xì)胞裂解、離心、層析等技術(shù)。注意事項(xiàng)：-T4UvsX重組酶的保存液中甘油含量為20%，建議單獨(dú)分裝保存，以避免反復(fù)凍融。-該酶無核酸酶活性，這表明它在催化反應(yīng)時(shí)不會(huì)切割DNA鏈，而是促進(jìn)DNA鏈的重組。-本產(chǎn)品用于科研用途，不應(yīng)用于臨床診斷。應(yīng)用：-T4UvsX重組酶主要用于等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)，如重組酶聚合酶擴(kuò)增（RPA），這是一種快速、靈敏的核酸檢測(cè)技術(shù)。通過遵循這些保存和純化指南，研究人員可以確保T4UvsX重組酶在實(shí)驗(yàn)中的有效性和可靠性。通過SDS-PAGE、Western blot、質(zhì)譜等方法驗(yàn)證蛋白的純度和分子量。通過活性測(cè)試評(píng)估蛋白的生物活性。p5 Ligand for Dnak and and DnaJ

T4UvsX重組酶在生產(chǎn)時(shí)由大腸桿菌表達(dá)和純化，指的是利用分子生物學(xué)技術(shù)將T4UvsX重組酶的基因克隆到大腸桿菌（Escherichiacoli）中，然后通過大腸桿菌的生物合成機(jī)制來生產(chǎn)這種酶。具體過程如下：1.**基因克隆**：首先，科學(xué)家們會(huì)從T4噬菌體中分離出編碼T4UvsX重組酶的基因。2.**載體構(gòu)建**：將這個(gè)基因插入到一個(gè)質(zhì)粒（一種小型、圓形的DNA分子）中，這個(gè)質(zhì)粒可以作為載體，將目標(biāo)基因?qū)氪竽c桿菌。3.**轉(zhuǎn)化**：將含有T4UvsX基因的質(zhì)粒轉(zhuǎn)化到大腸桿菌細(xì)胞中。轉(zhuǎn)化是指將外源DNA引入到細(xì)胞內(nèi)的過程。4.**表達(dá)**：一旦質(zhì)粒進(jìn)入大腸桿菌細(xì)胞，它將開始表達(dá)T4UvsX基因，即利用大腸桿菌的核糖體和其他細(xì)胞機(jī)制來合成T4UvsX重組酶的蛋白質(zhì)。5.**培養(yǎng)**：將轉(zhuǎn)化后的大腸桿菌在適宜的培養(yǎng)基中培養(yǎng)，使其繁殖，從而增加T4UvsX重組酶的產(chǎn)量。6.**純化**：培養(yǎng)一段時(shí)間后，收集大腸桿菌細(xì)胞，通過一系列生化方法（如離心、過濾、層析等）從細(xì)胞裂解物中提取并純化T4UvsX重組酶。Recombinant Cynomolgus IL-4 R alpha/CD124 Protein,His Tag在基因編輯中，Pfu DNA Polymerase 可用于目的基因或編輯工具的克隆，減少克隆過程中的非目標(biāo)突變。

磁珠法質(zhì)粒小量抽提試劑盒通過一系列優(yōu)化的步驟來確保從細(xì)菌細(xì)胞中提取高質(zhì)量和高純度的質(zhì)粒DNA。以下是這一過程的一般步驟：1.**細(xì)胞培養(yǎng)**：-首先，將含有質(zhì)粒的大腸桿菌在適宜的培養(yǎng)基中培養(yǎng)至適宜密度（通常是OD600約0.6-1.2）。2.**裂解細(xì)胞**：-使用試劑盒提供的裂解液（含有SDS和可能的其他裂解成分）破壞細(xì)菌細(xì)胞壁和膜，釋放出細(xì)胞內(nèi)容物。3.**吸附磁珠**：-將磁珠加入裂解后的混合物中，磁珠表面修飾有能夠特異性結(jié)合核酸的配體，使得質(zhì)粒DNA吸附于磁珠表面。4.**磁分離**：-利用磁力架將吸附有質(zhì)粒DNA的磁珠從溶液中分離出來，去除未結(jié)合的蛋白質(zhì)和其他細(xì)胞碎片。5.**洗滌雜質(zhì)**：-經(jīng)過幾次洗滌步驟，使用試劑盒提供的洗滌液去除吸附在磁珠表面的蛋白質(zhì)、RNA和其他雜質(zhì)。6.**去除洗滌液**：-磁分離后，小心地移除洗滌液，避免磁珠干燥或吸入磁珠，以確保純度。7.**洗脫質(zhì)粒**：-使用試劑盒提供的洗脫液（通常是低鹽或高pH的緩沖液）將質(zhì)粒DNA從磁珠上洗脫下來。8.**收集質(zhì)粒**：-洗脫后的質(zhì)粒DNA通常在室溫或4°C下保存，避免多次凍融，以維持DNA的完整性。

磁珠本身并不直接參與電泳過程，但它們可以用于電泳后的樣品處理，特別是在核酸（DNA或RNA）的提取和純化過程中。以下是使用磁珠進(jìn)行電泳后樣品處理的一般步驟：1.**凝膠電泳**：-首先，將DNA或RNA樣品通過凝膠電泳進(jìn)行分離。凝膠通常是瓊脂糖或聚丙烯酰胺凝膠，根據(jù)樣品的大小和類型選擇合適的凝膠濃度和緩沖體系。2.**觀察和切割**：-電泳完成后，使用紫外線照射凝膠并使用適當(dāng)?shù)娜玖希ㄈ鏓B或SYBRGreen）對(duì)DNA或RNA進(jìn)行染色，以在紫外光下觀察到DNA或RNA的條帶。3.**樣品提取**：-確定目標(biāo)DNA或RNA條帶后，使用干凈的工具（如切割器或移液槍）從凝膠中切割出含有目標(biāo)分子的凝膠片段。4.**磁珠準(zhǔn)備**：-根據(jù)磁珠試劑盒的說明書，準(zhǔn)備磁珠。通常包括磁珠的重懸和可能的表面修飾，以確保它們能夠特異性地結(jié)合目標(biāo)核酸。5.**樣品與磁珠混合**：-將切割出的凝膠片段轉(zhuǎn)移到含有磁珠的溶液中，溫和地混合以促進(jìn)磁珠與核酸的結(jié)合。6.**磁分離**：-將含有磁珠和核酸的混合物置于磁分離架上，利用磁場(chǎng)使磁珠快速聚集在管底，從而實(shí)現(xiàn)與溶液的分離。7.**洗滌**：-移除未結(jié)合的溶液，向磁珠上加入洗滌液，再次進(jìn)行磁分離以去除雜質(zhì)。在一項(xiàng)研究中，比較了具有不同NLS融合的Cas9蛋白和Cas9 mRNA在斑馬魚基因組編輯中的效率。

DNA瓊脂糖凝膠電泳是一種常用的分子生物學(xué)技術(shù)，用于分離、鑒定和定量DNA片段。以下是關(guān)于DNA瓊脂糖凝膠電泳的一些關(guān)鍵點(diǎn)：1.**原理**：-利用瓊脂糖凝膠作為介質(zhì)，DNA片段在電場(chǎng)作用下根據(jù)其大小和電荷差異進(jìn)行分離。較小的DNA片段遷移速度快，而較大的片段遷移速度慢。2.**瓊脂糖**：-一種由瓊脂糖粉末和緩沖液（如TAE或TBE）混合制成的凝膠。瓊脂糖濃度通常在0.7%到2%之間，濃度越高，分辨率越高，但凝膠孔隙越小，遷移速度越慢。3.**樣品準(zhǔn)備**：-DNA樣品通常需要在加載前進(jìn)行適當(dāng)?shù)奶幚恚缂兓⑾♂專袝r(shí)還需添加樣品緩沖液以保證樣品在電泳過程中的穩(wěn)定性。4.**加載樣品**：-使用微量移液管將樣品和加載緩沖液（通常含有追蹤染料，如溴酚藍(lán)）混合后，小心地加載到凝膠孔中。5.**電泳**：-將凝膠置于電泳槽中，連接電源，施加恒定電壓進(jìn)行電泳。電壓和時(shí)間根據(jù)凝膠濃度和所需分辨率進(jìn)行調(diào)整。6.**染色**：-電泳完成后，為了可視化DNA條帶，通常使用熒光染料如EB（溴化乙錠）或SYBRGreen進(jìn)行染色。染色后的凝膠在紫外光下觀察，DNA條帶會(huì)發(fā)出熒光。7.**分析**：-通過比較DNA條帶的位置和已知大小的DNA標(biāo)準(zhǔn)品（DNAladder），可以估計(jì)DNA片段的大小。

Recombinant Biotinylated Human MAGE-A3 (HLA-A*24:02) Protein, His-Avi Tag 是一種通過重組DNA技術(shù)。p5 Ligand for Dnak and and DnaJ

pA-Tn5轉(zhuǎn)座酶是一種經(jīng)過特殊改造的融合蛋白，由ProteinA和高活性的Tn5轉(zhuǎn)座酶組成，具有以下主要應(yīng)用：1.**高通量測(cè)序建庫(kù)**：pA-Tn5轉(zhuǎn)座酶可以用于快速構(gòu)建用于高通量測(cè)序的DNA文庫(kù)，通過其轉(zhuǎn)座酶活性實(shí)現(xiàn)DNA片段化，同時(shí)加上測(cè)序接頭，簡(jiǎn)化了傳統(tǒng)DNA測(cè)序建庫(kù)的多步過程。2.**CUT&Tag技術(shù)**：這是一種新興的蛋白質(zhì)與DNA相互作用研究方法，pA-Tn5轉(zhuǎn)座酶利用ProteinA與特定抗體結(jié)合，將轉(zhuǎn)座酶帶到目標(biāo)蛋白附近進(jìn)行DNA切割和標(biāo)簽添加，實(shí)現(xiàn)對(duì)蛋白質(zhì)結(jié)合位點(diǎn)的高通量測(cè)序分析。CUT&Tag技術(shù)具有高特異性、低背景噪音、高靈敏度、良好重復(fù)性等優(yōu)點(diǎn)，適用于表觀遺傳學(xué)、干細(xì)胞等領(lǐng)域的研究。3.**ATAC-seq**：pA-Tn5轉(zhuǎn)座酶也可用于ATAC-seq實(shí)驗(yàn)，這是一種研究染色質(zhì)可及性的方法，通過轉(zhuǎn)座酶在沒有核酸酶消化的情況下切割染色質(zhì)DNA，然后在切割位點(diǎn)加上測(cè)序接頭，進(jìn)行后續(xù)的測(cè)序分析。4.**轉(zhuǎn)錄組測(cè)序快速建庫(kù)**：有研究開發(fā)了基于Tn5轉(zhuǎn)座酶的轉(zhuǎn)錄組測(cè)序快速建庫(kù)方法，例如SHERRY方法，它利用Tn5轉(zhuǎn)座酶直接作用于RNA/DNA雜交鏈，簡(jiǎn)化了建庫(kù)過程，適用于單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序，提高了樣本的利用率和測(cè)序速度。