細(xì)胞凍存是將細(xì)胞放在低溫環(huán)境，減少細(xì)胞代謝，以便長(zhǎng)期儲(chǔ)存的一種技術(shù)。細(xì)胞凍存是細(xì)胞保存的主要方法之一，起到了細(xì)胞保種的作用。細(xì)胞凍存是細(xì)胞保存的主要方法之一，利用凍存技術(shù)可以使細(xì)胞暫時(shí)脫離生長(zhǎng)狀態(tài)而將其細(xì)胞特性保存起來(lái)，這樣在需要的時(shí)候再?gòu)?fù)蘇細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。目前現(xiàn)有技術(shù)中，細(xì)胞凍存液中的主要成分有10％二甲基亞砜(DMSO)、20％～90％胎牛血清(FBS)、剩余組分為完全培養(yǎng)基。培養(yǎng)基以及FBS可為細(xì)胞提供必要的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)。DMSO是一種滲透性保護(hù)劑，能夠降低細(xì)胞冰點(diǎn)，減少冰晶的形成，從而達(dá)到降低細(xì)胞損傷的保護(hù)效果。但FBS屬于動(dòng)物源性物質(zhì)，成分比較復(fù)雜，在臨床應(yīng)用上存在潛在的風(fēng)險(xiǎn)，也增加了污染的幾率，并且由于凍存液中含有動(dòng)物血清，會(huì)導(dǎo)致凍存液的成分存在不穩(wěn)定的因素。無(wú)血清凍存液用途：無(wú)血清凍存液穩(wěn)定性及保存條件：置于2～8℃避光保存，有效期為1年。南京無(wú)血清細(xì)胞凍存液廠家現(xiàn)貨

細(xì)胞凍存，我們應(yīng)該注意哪些事項(xiàng)：1、凍存液比例一般是培養(yǎng)基：血清：DMSO=7:2:1或5:4:1；動(dòng)物種屬的原代細(xì)胞凍存液可采用的比例是培養(yǎng)基：血清：DMSO=0:9:1，即直接用血清重懸細(xì)胞再加入DMSO，盡管如此，原代細(xì)胞的復(fù)蘇成活率還是很低。2、有文獻(xiàn)表明，細(xì)胞以l℃/min的速度冷凍存活率較髙，因?yàn)檫@一速度可以很好的控制細(xì)胞內(nèi)部晶體的產(chǎn)生。我們實(shí)際操作不可能將速度控制的這么精確，目前慣用的就是4℃30min、-20℃1h30min、-80℃2h后轉(zhuǎn)入液氮中。南京無(wú)血清細(xì)胞凍存液廠家現(xiàn)貨無(wú)血清凍存液使用方法：將凍存管直接轉(zhuǎn)移至-80C水箱中冷凍保存。

無(wú)血清細(xì)胞凍存液的使用方法及注意事項(xiàng)：1.將分裝好的細(xì)胞凍存管，直接置于-80度冰箱過(guò)夜保存，次日投入液氮中保存即可備注：1、凍存過(guò)程中，第2步在冰袋附近操作時(shí)，低溫避免保護(hù)劑對(duì)細(xì)胞造成損傷。2、細(xì)胞凍存管一定要保證完全密封，否則在復(fù)蘇過(guò)程中有可能會(huì)炸（1）提前開(kāi)啟水浴鍋，溫度調(diào)節(jié)到37（2）將凍存的細(xì)胞冷凍管從液氮中取出，迅速置于水浴鍋中融化，盡量1min融化，時(shí)間越短，對(duì)細(xì)胞影響越小。（3）將融化后的含細(xì)胞的冷凍保存液迅速析出置于新鮮培養(yǎng)基中充分混勻，（如細(xì)胞冷凍保存液為500ul，則加入到5ml新鮮培養(yǎng)基中，如細(xì)胞冷凍保存液位1ml，則加入10ml新鮮培養(yǎng)基中。）（4）混勻后立即離心，800轉(zhuǎn)，3min即可離心結(jié)束后棄上清，加入預(yù)溫的新鮮培養(yǎng)液。（5）混勻后分瓶置于二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。（二氧化碳濃度根據(jù)培養(yǎng)基要求決定，通常為5%【注意事項(xiàng)】細(xì)胞系凍存密度備注正常人成纖維細(xì)胞1～310cells/ml雜交瘤細(xì)胞1～310cells/ml某些hybridoma會(huì)因冷凍濃度太高而在解凍24小時(shí)后死去。

無(wú)血清快速細(xì)胞凍存液細(xì)胞冷凍保存方法：選擇凍存處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞有助于提高復(fù)蘇細(xì)胞存活率。1.按照常用方法收集懸浮細(xì)胞或貼壁細(xì)胞于試管中。2.按照培養(yǎng)細(xì)胞密度和所用細(xì)胞凍存管的尺寸計(jì)算所需凍存細(xì)胞數(shù)。（參考：5×105至5×106cells/ml）。3.取相當(dāng)于所需細(xì)胞數(shù)的細(xì)胞懸浮液量，置于離心管中，離心收集培養(yǎng)細(xì)胞（參考離心條件：1,000~2,000rpm，4℃，3~5min）。移去離心管中的上清液。4.加入適量的無(wú)血清型細(xì)胞凍存液于離心管中，使細(xì)胞濃度為5×105至5×106cells/ml。緩慢地混合均勻，制成細(xì)胞混合液。5.將離心管中的細(xì)胞混合液分裝于已標(biāo)示完全的冷凍保存管中。6.直接將含細(xì)胞混合液的凍存管放入-80℃冰箱，長(zhǎng)期冷凍保存。7.若研究者需要液氮保存時(shí)，可將完全凍結(jié)的凍存管（放入-80℃冰箱后至少一晝夜）移至-196℃液氮罐。在冰袋附近操作時(shí)，低溫避免保護(hù)劑對(duì)細(xì)胞造成損傷。

細(xì)胞冷凍的原理：細(xì)胞凍存及復(fù)蘇的基本原則是慢凍快融，實(shí)驗(yàn)證明這樣可以比較大限度的保存細(xì)胞活力。如今細(xì)胞凍存多采用甘油或二甲基亞砜作保護(hù)劑，這兩種物質(zhì)能提高細(xì)胞膜對(duì)水的通透性，加上緩慢冷凍可使細(xì)胞內(nèi)的水分滲出細(xì)胞外，減少細(xì)胞內(nèi)冰晶的形成，從而減少由于冰晶形成造成的細(xì)胞損傷。復(fù)蘇細(xì)胞應(yīng)采用快速融化的方法，這樣可以保證細(xì)胞外結(jié)晶在很短的時(shí)間內(nèi)即融化，避免由于緩慢融化使水分滲入細(xì)胞內(nèi)形成胞內(nèi)再結(jié)晶對(duì)細(xì)胞造成損傷。細(xì)胞凍存是細(xì)胞保存的主要方法之一。利用凍存技術(shù)將細(xì)胞置于-196℃液氮中低溫保存，可以使細(xì)胞暫時(shí)脫離生長(zhǎng)狀態(tài)而將其細(xì)胞特性保存起來(lái)，這樣在需要的時(shí)候再?gòu)?fù)蘇細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。而且適度地保存一定量的細(xì)胞，可以防止因正在培養(yǎng)的細(xì)胞被污染或其他意外事件而使細(xì)胞丟種，起到了細(xì)胞保種的作用。除此之外，還可以利用細(xì)胞凍存的形式來(lái)購(gòu)買(mǎi)、寄贈(zèng)、交換和運(yùn)送某些細(xì)胞。細(xì)胞凍存時(shí)向培養(yǎng)基中加入保護(hù)劑--終濃度5%．15%的甘油或二甲基亞砜(DMSO)，可使溶液冰點(diǎn)降低，加之在緩慢凍結(jié)條件下，細(xì)胞內(nèi)水分透出，減少了冰晶形成，從而避免細(xì)胞損傷。采用"慢凍快融"的方法能較好地保證細(xì)胞存活。無(wú)血清凍存液注意事項(xiàng)：凍存液中含DMSO成分，為了您的安全和健康，請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套。南京無(wú)血清細(xì)胞凍存液廠家現(xiàn)貨

無(wú)血清細(xì)胞凍存液使用方法：緩慢地混合均勻，制成細(xì)胞混合液。南京無(wú)血清細(xì)胞凍存液廠家現(xiàn)貨

細(xì)胞凍存時(shí)間和操作步驟：1、首先我們需要凍存培養(yǎng)液，通常細(xì)胞凍存液含10%的DMSO，或者是甘油、10-20%的小牛血清；、取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞，并且還需要用PBS進(jìn)行清洗，需要注意在這里要丟棄掉舊的細(xì)胞凍存液；3.去除PBS，加入適量的胰蛋白酶，以覆蓋住培養(yǎng)皿表面為宜，然后把單層生長(zhǎng)的細(xì)胞消化掉；然后離心1000rpm5min時(shí)間；4、去除胰蛋白酶，加入凍存培養(yǎng)液，輕輕吹打使細(xì)胞的分布變得均勻，調(diào)節(jié)細(xì)胞較終的密度為5×106/ml-1×107/ml，需要注意這是較佳的細(xì)胞密度；5、將細(xì)胞裝入凍存管之中，每管的含量應(yīng)該保持在1～1.5ml之間。在凍存管上標(biāo)明細(xì)名稱(chēng)、時(shí)間、操作者；6、較后要說(shuō)的就是細(xì)胞凍存的時(shí)間了，對(duì)于標(biāo)準(zhǔn)的凍存程序來(lái)說(shuō)，需要進(jìn)行梯度降溫，降溫速率-1～-2℃/min，一旦溫度達(dá)到-25℃以下時(shí)，那么就可增至-5℃～-10℃/min；等到-100℃的時(shí)候，可迅速的放入到液氮之中。也可將凍存管放入-20℃冰箱中兩小時(shí)，然后放入-70℃冰箱中進(jìn)行過(guò)夜，較后取出凍存管并移入到液氮容器內(nèi)。南京無(wú)血清細(xì)胞凍存液廠家現(xiàn)貨