無血清細胞凍存液用途：1.無血清細胞凍存液用于造血干細胞、間充質干細胞等干細胞的儲存。2.無血清細胞凍存液用于T淋巴細胞、NK細胞等免疫細胞的存儲。3.無血清細胞凍存液用于其他類型哺乳動物細胞的儲存。無血清細胞凍存液產品性能：1.不含牛血清，無動物源組分。傳統的凍存液，一般由胎牛血清、DMSO等組分組成。胎牛血清取自牛，因此，難以應用到需要避免接觸動物源的應用領域。用包括人白蛋白等蛋白組分替代血清的用途，無動物源組分。2.2-8℃即可穩定保存，無需冷凍，即取即用。為了避免反復凍融，傳統的細胞凍存液，需要分裝成小管后置于-20℃環境下保存。無血清細胞凍存液，2-8℃保存即可，無需再進行分裝。無血清快速細胞凍存液：含動物來源的血清成分，能夠有效提高細胞凍存活率和復蘇活力。鄭州正規無血清細胞凍存液直銷價

細胞凍存概念：細胞凍存是細胞保存的主要方法之一。利用凍存技術將細胞置于-196℃液氮中低溫保存，可以使細胞暫時脫離生長狀態而將其細胞特性保存起來，這樣在需要的時候再復蘇細胞用于實驗。而且適度地保存一定量的細胞，可以防止因正在培養的細胞被污染或其他意外事件而使細胞丟種，起到了細胞保種的作用。細胞凍存和復蘇的原則是：慢凍速融，這樣更加有利于保持細胞的活力。凍存細胞不加任何保護劑，會導致細胞內冰晶的產生，從而使細胞產生內源性的機械損傷，引起細胞內環境滲透壓，PH，電解質等的改變，進而促使細胞死亡。鄭州正規無血清細胞凍存液直銷價無血清細胞凍存液的優勢：不含血清，較大減少細胞污染。

凍存細胞復蘇方法：1.從冰箱里取出細胞冷凍保存管，立即放入37℃振動水浴槽中快速解凍。2.待凍存管中細胞混合液完全融化后，立即加入1ml細胞培養基于該冷凍管中與細胞混合，再將細胞混合液從凍存管中移入含有9ml該細胞培養基的試管中，混合均勻。3.離心收集培養細胞（參考離心條件：1,000~2,000rpm，4℃，3~5min），移去上清液。4.清洗細胞，充分洗凈殘留凍存液。5.加入適量的新鮮細胞培養基，使用移液管緩緩地均勻細胞混合液。適量地稀釋后，將細胞混合液移至事先準備好的培養瓶中。6.鏡檢后，研究者可根據各自方法和需要來進行細胞培養。

細胞凍存和復蘇的原則是：慢凍速融，這樣更加有利于保持細胞的活力。凍存細胞不加任何保護劑，會導致細胞內冰晶的產生，從而使細胞產生內源性的機械損傷，引起細胞內環境滲透壓，PH，電解質等的改變，進而促使細胞死亡。在過去的幾十年中，科研工作者將培養基、血清和DMSO按照一定的比例配制成凍存液，并配合手工使細胞從4℃，-20℃，-80℃到液氮中逐步轉移使其達到“慢凍”的效果。但這種自制的凍存液儲存時間一般比較短，不能滿足時間跨度大的實驗項目的需求。且這樣人力和時間成本大，人手操作的誤差和血清制品的批間差也給實驗結果帶來了不穩定性。在細胞培養中，細胞凍存是較關鍵環節之一。

無血清細胞凍存液：1.逐滴加入5-7mL的預熱的培養基到15mL的離心管中，加入的同時輕輕混勻。2.室溫（15-25°C）以300xg離心5分鐘。3.吸出培養基，使細胞沉淀完好無損。使用2mL血清移液管輕輕將細胞沉淀重懸于1mL的培養基中。小心保持細胞作為聚集體。4.將0.5mL的細胞混合物轉移到含有培養基的預包被的6孔板的培養孔中（例如，每個冷凍管可以鋪板兩個孔）。注意：鋪板多少孔可能需要根據凍存的細胞聚集體數量進行調整。通常在復蘇后，要比在常規的傳代鋪板更多的細胞聚集體數量。將培養板放入37°C培養箱。快速前后左右的搖晃培養板數次，將細胞聚集體分布均勻。24小時內不要移動培養板。無血清凍存液用途：細胞保藏中心，無血清細胞凍存液用于細胞株的長期保存。鄭州正規無血清細胞凍存液直銷價

無血清凍存液注意事項：本產品凍存細胞可以在-80°C冰箱保存3年以上。鄭州正規無血清細胞凍存液直銷價

細胞凍存中的注意事項：細胞凍存開始時，要溫好相應的培養基和相應的試劑，以及計數耗材，避免操作過程中手忙腳亂。用移液管吹打相應的胞液時，要保證移液管在液面以下吹打，管內要有液體，防止產生相應的氣泡，氣泡的張力會影響細胞的活率和生存狀態。計數細胞時要保證取胞液時也要混勻，這個過程比較重要，細胞不混勻，計數不準，此外吹打應該輕柔，避免細胞在吹打的過程中出現了相應的死亡。凍存離心用50ml離心管比較好，加凍存液吹打混勻比較方便，離心后不能過多地晃動離心管。當離心管液體較多的時候，可以直接傾倒，不要磕，多余的液體較好用泵吸出比較好。凍存支數少的情況，用泵頭輕柔吹打，避免出現氣泡，凍存支數多用移液管吹打。鄭州正規無血清細胞凍存液直銷價