外泌體的提取、分離方法:超高速離心法。常用的是超高速離心法,該方法是被譽為分離外泌體的“金標準”。該方法利用離心力從細胞培養液或生物流體獲得外泌體,經過400×g、2000×g、10000×g的低速離心,除去細胞及大的細胞分泌物;較后超高速100000×g離心得到外泌體[12]。超高速離心因操作簡單,不需要復雜的技術支持,并且成本相對較低而被普遍使用。但是該方法耗時、產率低,得到的外泌體的數量和質量很大程度上受轉子的類型、轉子沉降角度等因素影響,其中較主要的問題就是差速離心法獲得的沉淀物是外泌體,但也會有其他的囊泡、蛋白質或蛋白和RNA的聚集體。外泌體提取:通過色譜分離的外泌體不受剪切力的影響,這可能會改變囊泡的結構。開封外泌體提取試劑推薦廠家
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外泌體的提取、分離方法:開發高效、快速、穩定,并且保持外泌體結構和生物功能完整性的方法,是目前外泌體應用于臨床的基礎和前提。從細胞上清和體液中提取分離外泌體的方法很多,但是外泌體的純度和產量卻和分離方法息息相關。通常分離步驟少、產率高,但是純度會受到影響。鑒于每種分離方法都有其優缺點,實驗可以根據樣本來源、下游實驗目的等,選擇合適的外泌體分離方法。2015年,國際囊泡組織(InternationSocietyforExtracelluarVesicles,ISEV)指出,簡單依靠一種分離方法得到的外泌體的純度和產量都難滿足實驗的需求。因此,推薦聯合使用各種方法,從而得到高純度和高產量的外泌體。
外泌體作為近幾年來的研究熱點,受到了科研工作者的青睞及追捧。由于外泌體內攜帶有大量的miRNA,少量lncRNA,Mrna以及DNA蛋白質成為液體活檢的潛力無限的研究對相。所以,獲得純度高、內容物完整的外泌體非常之重要,那么,外泌體的提取方法也顯得尤為重要。一、差速離心法差速離心法可以說是傳統普遍的外泌體提取方法。原理是:首先低速離心以除去細胞和細胞凋亡碎片;隨后,高速離心以去除大囊泡;高速離心以沉淀外泌體。蘇州君欣生物科技有限公司重復離心操作還有可能對囊泡造成損害,從而降低其質量。
人體內多種細胞及體液均可分泌外泌體,包括內皮細胞、免疫細胞、血小板、平滑肌細胞等。當其由宿主細胞被分泌到受體細胞中時,外泌體可通過其攜帶的蛋白質、核酸、脂類等來調節受體細胞的生物學活性。外泌體介導的細胞間通訊主要通過以下三種方式:一是外泌體膜蛋白可以與靶細胞膜蛋白結合,進而啟動靶細胞細胞內的信號通路。二是在細胞外基質中,外泌體膜蛋白可以被蛋白酶剪切,剪切的碎片可以作為配體與細胞膜上的受體結合,從而啟動細胞內的信號通路。有報道稱一些外泌體膜上蛋白在其來源細胞膜上未能檢測出。三是外泌體膜可以與靶細胞膜直接融合,非選擇性的釋放其所含的蛋白質、mRNA以及microRNA。離心除去細胞器,留取上清。徐州正規外泌體提取試劑服務電話
外泌體攜帶大量特異性的蛋白質以及功能性的mRNAs、miRNAs等生物活性物質。開封外泌體提取試劑推薦廠家
外泌體在肺病進程中的作用:在一些病癥微環境中,一些病癥細胞來源的外泌體能夠誘導CD4+T分化為調節性T細胞,壓制機體的抗一些病癥免疫反應;肺病細胞分泌的外泌體含有miR-21和miR-29a,可在免疫細胞中結合并啟動TLR8,使TLR介導的NF-κB信號通路活化,從而導致一些病癥的生長和轉移。在肺病的侵襲和轉移過程中,細胞間通訊扮演著重要的角色。據有關報道稱,NSCLC分泌的外泌體內TGFβ和IL10的高表達與肺病的轉移密切相關。此外,啟動的T細胞可以通過調控Fas信號通路增加基質金屬蛋白酶9(MMP9)的表達,進而促進肺病的轉移。這些機制有望成為肺病治病的潛在靶點。雖然大多數外泌體都是促進一些病癥的侵襲與轉移,但也有報道稱,外泌體miR-302b可以通過壓制TGFβRⅡ來壓制肺病細胞的轉移與增殖。如純度和回收率低,雜蛋白較多(假陽性),顆粒大小不均一,產生難以去除的聚合物開封外泌體提取試劑推薦廠家