外泌體的提取、分離方法：超高速離心法。常用的是超高速離心法，該方法是被譽為分離外泌體的“金標準”。該方法利用離心力從細胞培養液或生物流體獲得外泌體，經過400×g、2000×g、10000×g的低速離心，除去細胞及大的細胞分泌物；較后超高速100000×g離心得到外泌體[12]。超高速離心因操作簡單，不需要復雜的技術支持，并且成本相對較低而被普遍使用。但是該方法耗時、產率低，得到的外泌體的數量和質量很大程度上受轉子的類型、轉子沉降角度等因素影響，其中較主要的問題就是差速離心法獲得的沉淀物是外泌體，但也會有其他的囊泡、蛋白質或蛋白和RNA的聚集體。外泌體（Exosome）發現于1986年，是一種直徑約30~100nm的雙層膜囊泡狀結構小體。深圳正規外泌體提取試劑銷售廠家

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所有培養的細胞類型均可分泌外泌體，且外泌體天然存在于體液中，包括血液、唾液、尿液、腦脊液和乳汁中。有關他們分泌和攝取及其組成、“運載物”和相應功能的精確分子機制剛剛開始研究。外泌體目前被視為特異性分泌的膜泡，參與細胞間通訊，對外泌體的研究興趣日益增長，無論是研究其功能還是了解如何將其用于微創診斷的開發。1983年，外泌體初次于綿羊網織紅細胞中被發現，1987年Johnstone將其命名為“exosome”。多種細胞在正常及病理狀態下均可分泌外泌體。其主要來源于細胞內溶酶體微粒內陷形成的多囊泡體，經多囊泡體外膜與細胞膜融合后釋放到胞外基質中。

外泌體的提取分離：1、超速離心法（差速離心）。超離法是常用的外泌體純化手段，采用低速離心、高速離心交替進行（如圖所示），可分離到大小相近的囊泡顆粒。超離法因操作簡單，獲得的囊泡數量較多而廣受歡迎，但過程比較費時，且回收率不穩定（可能與轉子類型有關），純度也受到質疑；此外，重復離心操作還有可能對囊泡造成損害，從而降低其質量。2、密度梯度離心。在超速離心力作用下，使蔗糖溶液形成從低到高連續分布的密度階層，是一種區帶分離法。通過密度梯度離心，樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集。此法獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣，耗時。外泌體提純試劑盒的特色與優勢：適用于多種物種。

外泌體與肺病預后：外泌體mirRNA和蛋白質被認為是NSCLC的預后因子。Dejima等在研究NSCLC患者預后的生物標志物時發現，外泌體miR-4257和miR-21的含量顯著上升。此外，還有研究表明，低水平miR-146a-5p的NSCLC患者較高水平miR-146a-5p的NSCLC患者有更高的復發率。Sandfeld-Paulsen等在研究276例NSCLC患者血漿的外泌體時發現，NY-ESO-1是其中對低生存率有顯著影響的標志物。Silva等利用TaqMan低密度芯片的方法系統分析了28位NSCLC患者體內的365種miRNA，其中let-7f、miR-30e-3p和miR-20b表達均下調，進一步研究發現，let-7f和miR-30e-3p水平可以區分早期和晚期NSCLC患者，高水平let-7f和miR-30e-3p與不良預后密切相關。外泌體提取：超離法是較常用的外泌體純化手段，采用低速離心、高速離心交替進行。南昌正規外泌體提取試劑推薦廠家

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PS不是你想有，想有就能有，迄今為止所發現的外泌體，并非所有的外膜表面都暴露PS。例如，細菌來源的外泌體膜表面沒有PS，因此，本款試劑不能提取這種外泌體。現在的研究尚未得知是否所有的外泌體上都會露出PS，但是上述的外泌體標記根據細胞種類不同表現出的信號強弱差大，通過利用本試劑盒PS親和法捕捉、提取外泌體是較好的方法。：這個MagCapture?ExosomeIsolationKitPS，1次提取的外泌體量大概是多少？實驗樣品的種類和體積不同，提取的外泌體量也不一樣。Wako的操作實例中，一次提取操作可獲得蛋白量約30μg/mL（BCA法檢測），粒子數1~2×1010（NanoSightLM10檢測）（經莫能菌素鈉刺激外泌體分泌的K562培養上清5mL濃縮為1mL后，對其進行提取）。另外，和光驗證了從1mL正常人混合血清提取一次，可回收約34μg/mL蛋白質（BCA法檢測），約5×109/mL的粒子數（NanoSightLM10檢測）。本試劑盒終可獲得100μL的洗脫液。深圳正規外泌體提取試劑銷售廠家