原代細胞培養之取材：取材作為原代細胞培養過程中的靠前部至關重要，以下幾種取材技術，你都用過哪些方法呢？各類組織取材，操作及注意事項：1.皮膚和粘膜主要取皮片，面積一般2~4平方厘米。2.內臟和實體瘤：1）無菌環境；2）熟悉所需組織的類型和部位；3）要避開破潰、壞死液化部分，以防污染，盡量去除混雜的結締組織。3.血液細胞一般多抽取靜脈外周血，或從淋巴組織中(如脾、扁桃體、胸腺、淋巴結等)分離細胞，取材時應注意抗凝。4.骨髓、羊水、胸/腹水細胞嚴格無菌，注意抗凝，還要盡快分離培養，離心后，用無鈣、鎂PBS洗兩次，再用培養液洗一次后即可培養，不宜低溫存放。用專門的原代細胞培養基進行培養，較大限度提高原代細胞的生長。正規原代細胞分離試劑盒銷售廠家

原代細胞的分離與培養：從組織制備原代細胞，即使捱過了極其嚴苛的解離步驟，不嚴謹的分離操作可能會導致細胞生長緩慢、表型不一致甚至細胞污染，特別是由于組織中可能含有細菌等微生物，污染問題對于原代細胞的分離和培養是一個很大的隱患。而為了讓研究人員不再為這些問題頭疼，現在已經出現了一些細胞公司可供應現成的原代細胞，并對應配有充分優化的培養基和實驗方案，這使得原代細胞的培養和研究比以往要輕松得多。而對于具備自主從組織中獲取原代細胞的實驗室，也建議以商業化的原代細胞作為對照，采用均一性和穩定性更好的P2/P3代次進行實驗，并用專門的原代細胞培養基進行培養，較大限度提高原代細胞的生長。深圳正規原代細胞分離試劑盒銷售廠家體外分裂增殖的速度較快，營養成分消耗大，換液時間隔一般較短。

細胞凍存：通常我們不推薦重新凍存原代細胞，因為這可以促進細胞衰老和/或導致功能變化。原代細胞非常敏感，重新凍結可能導致細胞死亡或損傷。與細胞系不同，原代細胞增殖有限，我們建議盡早使用原代細胞進行實驗以防止遺傳漂移，如果你正在使用一個增殖困難的細胞類型，你應該密切監測細胞形態，因為少量混雜的細胞（如成纖維細胞）可能隨著時間的推移，大量生長從而成為主要細胞。正常的原代細胞培養，在無污染的情況下，建議培養基中不加抗體，抗體會影響細胞的某些基因變異從而導致實驗數據有差異，所以cellsystems的細胞在分離提取時就考慮到這點，他們不會采用任何抗體去分離和純化的同時，通過酶消化或者離心洗滌的方法讓細胞達到95%以上的純度，這樣得到的實驗數據更為準確

原代細胞標準化培養：由于每種原代細胞培養的條件迥異，而且每個實驗室都摸索出自己的培養條件，而對于一個特定的組織塊，所用培養條件不一樣，得出的所需細胞族群就不一樣，因為每種組織塊都含有不同種類的細胞群，而每一種細胞群在所選定的培養條件下（比如所選蛋白分解酶的種類和條件，細胞因子的種類，基礎培養基的種類或者是培養時間長短）都會得出不同的結果。由于各實驗室采取不同的培養條件，即使是同一塊心組織就有可能造成A實驗室獲得30%的心肌細胞，70%其他種類細胞，而B實驗室卻能獲得70%所需心肌細胞，30%為成纖維、脂肪等種類。這樣的話，即使是做同一項目的實驗，就有可能得出相反的科學結論。因此，早在2004年，美國科學界就質疑之前以原代細胞為主的科研文章，并同時提出原代細胞標準化培養的概念應用于大規模藥物篩選，越來越多地用于更可靠地研究生命科學。

細胞培養注意事項及常見問題解答：傳代1、貼壁細胞傳代時，先用消化液潤洗一遍；棄掉后，再加入適量消化液置于孵箱或鏡下觀察消化；當細胞變圓，彼此之間產生空隙，加入等量或大量的培養基終止消化，培養基中的血清可以克制胰蛋白酶的活性。2、這里我沒有明確提到胰蛋白酶的濃度，并不是說濃度越高越好。胰蛋白酶底物的特異性差，會破壞細胞膜成分。PH8.0，37度環境下，消化液的消化能力是較強的。培養基中的血清會降低胰酶的消化能力，所以每次消化前，也要用PBS反復沖洗干凈培養皿。日常用的比較多的消化液濃度：a)0.25%胰蛋白+0.02%EDTA。適當增大原代培養接種的細胞密度。廈門正規原代細胞分離試劑盒供應商

原代培養的分離細胞在初次接觸體外環境時，它們之間會互相影響。正規原代細胞分離試劑盒銷售廠家

原代細胞的培養是指直接從機體取下細胞、組織和部位后立即進行培養。因此，較為嚴格地說是指成功傳代之前的培養，此時的細胞保持原有細胞的基本性質，如果是正常細胞，仍然保留二倍體數。原代細胞在培養的過程中，也可能產生基因突變而形成無限傳代的細胞株，傳代次數越多，就越有可能變成細胞株（基因缺陷型），因此科學界也通常把靠前代至第十代以內的培養細胞統稱為原代細胞培養。較常用的原代細胞的培養有組織塊培養和分散細胞培養。組織塊培養是將剪碎的組織塊直接移植在培養瓶壁上，加入培養基后進行培養正規原代細胞分離試劑盒銷售廠家