大量關于一些病癥相關巨噬細胞的研究表明，一些病癥相關巨噬細胞通過與一些病癥細胞進行細胞間通訊，與一些病癥進展和轉移相關，然而對TAM與一些病癥細胞之間通信的研究限制于可溶性因子，例如促炎細胞因子，其中包括趨化因子、炎癥因子和生長因子等。較近的研究證據表明，外泌體是一些病癥微環境中不同細胞類型之間的重要通訊媒介。外泌體將信息從一個細胞傳遞到另一個細胞并重編程受體細胞。目前大部分研究都集中在一些病癥細胞分泌的外泌體，關于TAM衍生的外泌體及其對治病細胞的影響知之甚少。TAM具有兩種相反的表型：M1亞型巨噬細胞具有抗一些病癥作用，M2型巨噬細胞具有致瘤作用活性。TAM的表型由特定的一些病癥來源的趨化因子和外泌體調節。較近的一項研究表明，一些病癥來源的外泌體miRNA調節一些病癥促進M2巨噬細胞的極化。然而，TAM衍生的外泌體對一些病癥進展和轉移的調節尚未明確定義。目前，TAM的外泌體概況仍然大部分未知，并且TAM衍生的外泌體對于一些病癥進展在功能上是否必需還未確定。通過密度梯度離心，樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集。蕪湖正規外泌體提取試劑廠家現貨

外泌體的提取方法：1、磁珠免疫法。外泌體表面有其特異性標記物（如CD63、CD9蛋白），用包被抗標記物抗體的磁珠與外泌體囊泡孵育后結合，即可將外泌體吸附并分離出來。磁珠法具有特異性高、操作簡便、不影響外泌體形態完整等優點，但是效率低，外泌體生物活性易受pH和鹽濃度影響，不利于下游實驗，難以普遍普及。2、多聚物沉淀法。聚乙二醇（PEG）為常用的多聚物，可與疏水性蛋白和脂質分子結合共沉淀，早先應用于從血清等樣本中收集病毒，現在也被用來沉淀外泌體，其原理可能與競爭性結合游離水分子有關。利用PEG沉淀外泌體存在不少問題：比如純度和回收率低，雜蛋白較多（假陽性），顆粒大小不均一，產生難以去除的聚合物，機械力或者吐溫-20等化學添加物將會破壞外泌體等南昌外泌體提取試劑產品介紹形成了一種全新的細胞間信息傳遞系統，影響細胞的生理狀態并與多種疾病的發生與進程密切相關。

研究初次發現瘧原蟲傳染小鼠血漿外泌體(exosomes)能夠壓制一些病癥血管生成，并初步闡明其分子機制。研究加深了對瘧原蟲傳染宿主所分泌的外泌體與一些病癥血管生成之間的相互作用的認識，為開發瘧原蟲傳染來源的外泌體作為一種新型抗一些病癥制劑奠定了基礎。研究人員選用肺病小鼠模型作為研究對象，從傳染瘧原蟲的小鼠血漿中獲得外泌體，并將這些外泌體注射到小鼠的一些病癥內部，并與沒有瘧原蟲傳染的小鼠血漿外泌體進行對照。研究發現，瘧原蟲傳染小鼠的血漿外泌體明顯壓制一些病癥血管的生成。進一步的研究發現，瘧原蟲傳染的小鼠血漿外泌體通過至少四種特殊的微小RNA(miR16-5p/17-5p/322-5p/497-5p)壓制血管內皮細胞VEGF受體(VEGFR2)的表達從而阻斷血管生成的信號通路。這些發現加深了人們對瘧原蟲抗病機理的理解，并為瘧原蟲療法治病一些疾病的臨床研究提供進一步的理論依據。

外泌體的提取、分離方法：尺寸排阻色譜法和超濾法；尺寸排阻色譜法是利用分子篩理論，較初是根據蛋白質分子大小分離蛋白質的色譜技術。該方法的主要優點是不需要很大的離心力，從而保證了外泌體的完整性。Mol等[13]對比超高速離心和尺寸排阻色譜法得到的外泌體蛋白，結果顯示，后者得到的外泌體的蛋白豐度高于前者。這些基于過濾或尺寸排阻色譜的新方法為外泌體大規模的生產和臨床應用提供了可能。超濾也是根據外泌體的尺寸將其分離出來的一種方法，超濾一般被認為是外泌體分離過程中的一個準備過程，通過超濾除去大分子和小分子的蛋白質。不過連續的超濾可以分離出外泌體，和超高速離心相比，超濾不需要特殊的設備就可以較短時間內分離出外泌體。但是，超濾膜對外泌體的黏附作用會降低外泌體的產量，并且超濾過程中施加的外力可能會使外泌體變形或者破裂。可以使用NanoSight?或電子顯微鏡分析純化的外泌體，以評估近似外泌體大小范圍和濃度。

外泌體的提取、分離方法：梯度密度離心法。研究發現，外泌體的密度在1.1~1.19kg·L-1之間，因此，可以采用密度梯度離心法來分離外泌體。該方法是將超速離心結合蔗糖密度梯度或蔗糖墊結合，原理是先除去非囊泡物質，再通過梯度密度濃縮提取外泌體，該方法可以得到相對較為純凈的外泌體。傳統的梯度密度方法通常需要離心16h，但是2012年，研究者[15]使用了62~90h才分離出某些確切囊泡，因此，該方法可能不足以沉淀所有的外泌體。如果離心時間不充足，污染物質可能和外泌體保持在相同的密度層，特別是這個密度范圍又比較寬。外泌體提取：密度梯度離心。蕪湖正規外泌體提取試劑廠家現貨

外泌體提取：尺寸排阻色譜。尺寸排阻色譜是基于大小而非分子量實現分離大分子。蕪湖正規外泌體提取試劑廠家現貨

外泌體的提取方法：1.超速離心法（差速離心）。超離法是較常用的外泌體純化手段，采用低速離心、高速離心交替進行，可分離到大小相近的囊泡顆粒。超離法因操作簡單，獲得的囊泡數量較多而廣受歡迎，但過程比較費時，且回收率不穩定（可能與轉子類型有關），純度也受到質疑；此外，重復離心操作還有可能對囊泡造成損害，從而降低其質量。2.密度梯度離心。在超速離心力作用下，使蔗糖溶液形成從低到高連續分布的密度階層，是一種區帶分離法。通過密度梯度離心，樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集。此法獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣，耗時，對離心時間極為敏感。蕪湖正規外泌體提取試劑廠家現貨