外泌體的提取分離方法：1、PEG-base沉淀法：聚乙二醇可與疏水性蛋白和脂質分子結合共沉淀，早先應用于從血清等樣本中收集病毒，現在也被用來沉淀外泌體，其原理可能與競爭性結合游離水分子有關。利用PEG沉淀外泌體存在不少問題：比如純度和回收率低，雜蛋白較多（假陽性），顆粒大小不均一，產生難以去除的聚合物，機械力或者吐溫-20等化學添加物將會破壞外泌體等，因此發表文章時易受質疑。2、試劑盒提?。航鼛啄陙恚袌錾弦殉霈F各種商業化的外泌體提取試劑盒，有的是通過特殊設計的過濾器過濾掉雜質成分，有的則采用空間排阻色譜法(SEC)進行分離純化，也有的則利用化合物沉淀將法外泌體沉淀出來。隨著外泌體研究的不斷深入，它的應用已經涉及醫學基礎和免疫領域、寄生蟲領域。體液外泌體提取試劑盒方法

當外泌體在1980年初次被發現后，其被認為是細胞排泄廢物的一種方式，如今隨著大量對其生物來源、其物質構成及運輸、細胞間信號的傳導以及在體液中的分布的研究發現外泌體具有多種多樣的功能。外泌體的功能取決于其所來源的細胞類型，其可參與到機體免疫應答、抗原提呈、細胞遷移、細胞分化、肉瘤侵襲等方方面面。有研究表明肉瘤來源的外泌體參與到肉瘤細胞與基底細胞的遺傳信息的交換，從而導致大量新生血管的生成，促進了肉瘤的生長與侵襲。體液外泌體提取試劑盒方法免疫印跡或蛋白質印跡是分析外泌體較常用的方法之一，其原理是外泌體上特異性抗原與抗體結合。

外泌體分離的主要挑戰之一是消除納米級污染物，包括干擾外泌體標志物解析的游離核酸和脂蛋白。超速離心是目前分離外泌體的主要技術。盡管如此，它仍難以符合臨床應用所需的標準，主要是由于該方法得到的外泌體純度不足，產量較低，完整性欠佳且分離純化操作耗時長。其他方法，例如基于聚乙二醇（PEG）的沉淀，磷脂酰絲氨酸親和捕獲，尺寸排阻色譜法和膜親和捕獲，近年來已經出現在特定的應用中，但是只適用于特定場景。近來，非對稱流場-流分離方法已被用于從細胞和瘤子培養基中高分辨率地分選EV亞群，但其通量受到繁瑣的樣品制備程序的影響。單一分析耗時的過程也限制了其普遍的應用。因此，目前亟需開發創新技術以提高外泌體分離純化的效率，純度，產量，速度和耐用性?；诔瑸V的技術提供了潛在的有前途的替代方法，但它們也有缺點。在切向流過濾中，使進料流平行于多孔膜流動，以避免堵塞。然而，盡管已實現使用切向流過濾從大量條件細胞培養基中濃縮外泌體，但受制于其一次性模塊的成本高，高剪切應力，難以處理小體積樣品等因素而難以應用于臨床分析。

外泌體的來源與特征：外泌體是一種存在于細胞外的多囊泡體，通過細胞內吞泡膜向內凹陷形成，其大小均一，直徑為40-100nm，密度為1.10-1.18g/mL。外泌體可由間充質干細胞、淋巴細胞和肉瘤細胞等多種類型細胞主動分泌釋放。外泌體內主要含有核酸、蛋白質和脂質等，可作為疾病診斷標記物、調控靶細胞功能、參與細胞生物學活動等。例如：含有miR-140-5p的滑膜間充質干細胞來源外泌體(SMSC-Exo影響軟骨組織再生；骨髓間充質干細胞來源外泌體攜帶的miR-196a可調節成骨細胞分化促進大鼠顱骨缺損的骨再生。外泌體存在于組織樣本中，如腦組織、肌肉組織、脂肪組織等。

DLS使用由于粒子的布朗運動而產生的波動散射光的強度來估計外泌體顆粒的大小分布及其zeta電位。DLS樣品制備方便，只需要簡單的過濾，測量速度較快，需要的樣品體積較少。但由于動態光散射技術是基于光強測量，散射光的強度與粒徑的六次方成正比，使得當測量多種粒徑的混合懸浮液時，通常會偏向于檢測較大粒徑產生的散射光，比較難檢測到較小顆粒。所以DLS不適合對粒徑分布較寬的外泌體樣本的測量，只適合尺寸較為均一的外泌體樣本，并且無法測量樣品中外泌體的濃度。外泌體產生相關的重要分子：Ral、ARF6、PLD2、RAB家族。體液外泌體提取試劑盒方法

外泌體膜中有膜轉運融合蛋白annexins、RAN、GTPases。體液外泌體提取試劑盒方法

AFC自動收集器是將qEV分離法這一過程自動化的儀器，將用來收集外泌體樣本的微量離心管放置在AFC的中間轉盤內，根據稱重精確測量流體體積，可精確的測量到樣品中每一個液滴的重量并精確測量總重量。將在空隙體積之前從qEV柱洗脫的流體收集到AFC轉盤的單獨中心孔中并送至廢液桶，避免將不需要的空隙部分收集到微量離心管中。在提取期間，當達到設定的提取體積后，轉盤會自動旋轉到下一個微量離心管繼續收集，到收集完成后自動停止。微滴式數字PCR技術不佳有效提高了核酸分子的擴增效率，而且由于采用微滴計數的方法進行定量，可以不依賴與RT-PCR的熒光信號和Ct值，對所測樣品中的核酸分子進行一定定量。體液外泌體提取試劑盒方法

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