尺寸排阻色譜法（SEC）根據大小來分離樣本。該技術應用了一個裝有多孔聚合物珠的色譜柱，該聚合物珠包含多個孔和通道，分子根據其直徑穿過。半徑小的分子穿過柱子的孔遷移需要較長的時間，而大分子則較早地從柱子上洗脫下來。SEC可精確分離大分子和小分子。與離心分離方法相比，SEC分離的外泌體不受剪切力的影響，剪切力可能會改變囊泡的結構。此方法分離到的外泌體純度較高，在電鏡下大小均一，但是獲取量少，所需設備特殊。此外，SEC方法與超濾相結合已被用于尿液來源的外泌體的分離和分析。對外泌體的分析和檢測可以輔助疾病的早期診斷、療效評價和預后分析。鼻腔灌洗液外泌體NTA

外泌體的來源與特征：外泌體是一種存在于細胞外的多囊泡體，通過細胞內吞泡膜向內凹陷形成，其大小均一，直徑為40-100nm，密度為1.10-1.18g/mL。外泌體可由間充質干細胞、淋巴細胞和肉瘤細胞等多種類型細胞主動分泌釋放。外泌體內主要含有核酸、蛋白質和脂質等，可作為疾病診斷標記物、調控靶細胞功能、參與細胞生物學活動等。例如：含有miR-140-5p的滑膜間充質干細胞來源外泌體(SMSC-Exo影響軟骨組織再生；骨髓間充質干細胞來源外泌體攜帶的miR-196a可調節成骨細胞分化促進大鼠顱骨缺損的骨再生。鼻腔灌洗液外泌體NTA外泌體由各種類型的脂質和蛋白質組成，這些脂質和蛋白質衍生自形成外泌體的親代細胞。

細胞外囊泡是蛋白質、mRNA、miRNA和脂質運輸來完成細胞間通訊通路的重要媒介，根據它們的大小和發生分為三類，包括外泌體、微泡和凋亡小體。其中，外泌體是直徑大約為40-100nm的包裝囊泡，由多種細胞分泌，內含有特定的蛋白質、脂質、細胞因子或遺傳物質。來源于不同的組織的外泌體不只具有其特異性蛋白分子，而且還包含其行使功能的關鍵分子。近年來，隨著外泌體研究的不斷深入，它的應用已經涉及瘤子診療領域、醫學基礎和免疫領域、寄生蟲領域；臨床研究上已涉及心血管系統、內分泌代謝系統等。超速離心是目前分離外泌體的主要技術。

為什么超速離心提取外泌體看不到沉淀？答：這種問題通常有三種可能性，其一：使用的細胞上清或者血清量太低，從而造成了這樣的結果。其二：使用了不透明的超速離心管，一般來說外泌體產量都比較小，所以凡是不透明的管子，基本都是比較難見到明顯沉淀的，可以當做有沉淀，然后操作下去即可。其三：使用了角轉。部分品牌離心機的角轉管壁粘附性比較低，超離結束沒多久沉淀就會滑落下去，所以請在離心結束時趕緊去收樣。外泌體的角色：1、外泌體發揮功能并一定需要受體細胞攝入外泌體：外泌體的膜蛋白有可能與細胞膜蛋白作用，活躍細胞內通路。2、外泌體的角色之一：細胞-細胞通訊，比如抗原遞呈。外泌體的數量：人體中大約有1014個，近乎于平均每個細胞產生1000-10000個。

流式細胞技術是細胞和小顆粒定性和定量表征的有效方法，其用于外泌體定量檢測的準確性也在不斷上升。將外泌體表面特異性標志物CD63、CD81等相應抗體進行標記，可用流式細胞儀檢測到陽性表達，從而實現對外泌體的定量。但流式細胞技術檢測時需要單顆粒懸浮液，當外泌體濃度高或分離過程中發生外泌體囊泡聚集時將導致一次觀察到多個顆粒，從而導致數據不準確。因此，為了通過流式細胞儀觀察，需要將外泌體通過免疫捕獲或共價結合固定在磁珠表面上，從而便于將外泌體囊泡暴露于已知或者預期在外泌體表面表達的抗原的熒光偶聯抗體中。在流式細胞術之前，可以在落射熒光顯微鏡（EPI）下觀察與磁珠和熒光抗體偶聯的外泌體囊泡。當樣品通過流式細胞儀時采集熒光信號，不只可以對外泌體進行高通量分析，還可以基于抗原表達對外泌體進行定量或分類。外泌體功能在研究初期階段發現是參與細胞成熟過程中去除不必要的蛋白質。鼻腔灌洗液外泌體NTA

疾病的進展和對診療的反應可以通過外泌體的多組分分析來確定。鼻腔灌洗液外泌體NTA

磁珠免疫法分離外泌體：將針對目的抗原的抗體通過生物素-鏈霉親和素連接到磁珠表面，然后將磁珠與樣品共孵育，使外泌體特異性結合到磁珠上形成磁珠-外泌體復合物，再用蒸餾水或者PBS沖洗，結尾用甘氨酸-Tris-HCl溶液洗脫獲得外泌體。該方法相對于ELISA的好處主要是，珠粒提供了更大的表面積來捕獲外泌體，從而提高了分離效率。此外，使用磁珠時，樣品起始體積沒有上限，而基于微孔板的ELISA分析的較大樣品體積為100μL，且ELISA洗脫雜質時容易造成孔間交叉污染。當將磁珠法與金標準外泌體分離方法進行比較時，磁珠法可分離出更純凈的外泌體，特異性高、速度更快，并且不需要昂貴的儀器。另外，與其他分離方法相比，磁珠法不影響外泌體形態。但是采用磁珠法時，外泌體生物活性易受PH和鹽濃度影響。鼻腔灌洗液外泌體NTA

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