目前基因藥物領域常用的病毒載體有腺病毒、慢病毒、重組腺相關病毒（rAAV）以及逆轉錄病毒等，其中AAV因其免疫原性極低、安全性高、宿主細胞范圍廣、擴散能力強、表達穩定以及特異性強等優勢脫穎而出。據NIH統計，已有超過200個正在進行或已完成的基因藥物臨床試驗使用rAAV載體。盡管rAAV基因藥物已顯示出巨大的前景，但是強大、穩健而且可放大的基因載體生產制造工藝一直是CGT行業的痛點。目前rAAV生產平臺主要有三種：三質粒瞬轉體系（TransientTransfection, TT）、桿狀病毒表達載體體系(Baculovirusexpression vector，BEV)和包裝細胞體系(Packaging/Producercell line，PCL)。使用SAN HQ高鹽核酸酶可以更少的酶量獲得更高的去除率，對載體的產量和活性沒有任何負面影響；廣東500mM鹽濃度條件高鹽核酸酶70921-150

一個美國客戶做了對照實驗，比較Benzonase和SAN HQ高鹽核酸酶純化病毒載體的效率。實驗設計如下，HEK293細胞轉染及培養后，分別取了150Million的293細胞進行裂解，分別在各自適宜的條件下（即SAN HQ組反應條件為500mM鹽濃度，而Benzonase組反應條件是150mM鹽濃度）加入等量的酶（0、2kU、3kU、4kU、5kU、6kU），37°孵育1hr，加入Picogreen染料后檢測DNA的殘留量。結果發現，SAN HQ高鹽核酸酶組用更少的酶得到了更好的去除效果（即2kU的SAN HQ消化結果明顯優于6kU的Benzonase），且SAN HQ的高純化效率是非血清型依賴的。廣東500mM鹽濃度條件高鹽核酸酶70921-150在AAV生產過程中使用SAN HQ高鹽核酸酶。

大規模生產階段，AAV/LV載體生產流程跟抗體、疫苗類藥物的生產類似，主要包含上游培養、下游純化及制劑部分。上游培養分為質粒開發、細胞擴增、三質粒共轉染及病毒載體生產等步驟。下游純化分為細胞裂解釋放AAV病毒顆粒（可以通過去污劑、機械作用、高滲或凍融操作等）or收獲細胞上清液得到含LV病毒原液、加入核酸酶以減少宿主細胞核酸污染、澄清是通過離心或過濾等方法去除細胞碎片和雜質等、超濾濃縮以減少后續色譜純化體系、親合及離子交換等純化得到高純度病毒載體。制劑部分主要是超濾更換緩沖液、過濾除菌及制劑灌裝等。

殘留的宿主DNA是生產中產生的雜質，其存在潛在的致瘤性、傳染性和免疫原性等風險。相關研究表明，基因的大小普遍在200bp以上，因此大于200bp有可能會有一定的致病性，而且殘留DNA片段越大，生物制品的風險等級越高。因此，各國監管機構對其提出了嚴格要求。美國食品藥品監督管理局（FDA）在《關于人類基因zhiliao新產品生產指導文件》中明確指出HCD的片段要小于200bp。2022年5月，國家藥品監督管理局藥品評審中心（CDE）發布的《體內基因藥物產品藥學研究與評價技術指導原則（試行）》中也明確指出需對DNA殘留量和殘留片段大小進行控制，建議盡量將DNA殘留片段的大小控制在200bp以下。SAN HQ高鹽核酸酶是一種新型的、耐高鹽的工程化內切酶；

核酸酶活性受到很多因素影響，如鹽濃度、pH、底物、溫度等。因此，不同客戶、不同項目中核酸酶的使用條件都不一樣。目前，生物制藥行業對Benonase全能核酸酶的使用比較熟悉，如生理鹽或低鹽濃度、脫鹽操作等。對于AdV/AAV等項目，使用SAN HQ高鹽核酸酶替代Benzonase時，只需提高反應體系總鹽濃度到400mM-500mM即可，溫度、Mg2+濃度等條件不用做任何調整，同樣酶量的SAN HQ對宿主細胞DNA（HCD）的去除效果更好、病毒載體得率更高。經過工藝優化后，可以將SAN HQ高鹽核酸酶的用量減少到原來的1/3-1/4，且HCD去除效果及產品得率更高。SAN HQ用量是Benzonase用量的1/3-1/4，酶用量更少，成本更低、工藝更簡單。廣東500mM鹽濃度條件高鹽核酸酶70921-150

SAN HQ高鹽核酸酶能夠使載體表面的DNA去除更徹底，得到的AAV病毒顆粒更穩定。廣東500mM鹽濃度條件高鹽核酸酶70921-150

SAN HQ高鹽核酸酶發揮酶活性的條件比較廣。例如，該酶適宜的鹽濃度（NaCl）范圍是400mM-600mM，能耐受高達1M NaCl濃度。適宜反應溫度為25℃-37℃，能耐受4℃-38℃。Mg2+濃度大于1mM即可，在5-20mM范圍即可表現更高活性。跟全能核酸酶類似，SAN HQ高鹽核酸酶也是一款堿性核酸酶，其適宜pH為8.0-8.9，能耐受6.8-9.5。為了達到更高酶活性，可以通過調節pH實現。鑒于SAN HQ的耐受性，可以用于很多應用，如大規模生產、蛋白純化、蛋白組學等。廣東500mM鹽濃度條件高鹽核酸酶70921-150